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        • Agar Chapman
        • Agar Cetrimide
        • Agar Mac Conkey
        • Agar EMB
        • Agar Endo
        • Agar SS
        • Agar Verde Brillante
        • Agar Sulfito de Bismuto
        • Agar Tiosulfato Citrato Sales Biliares Sacarosa (TCBS)
        • Agar P
        • Agar F
        • Agar Bilis Esculina
        • Medio Palcam
      • Medios Diferenciales
        • Caldo de Moeller
        • Triple Azúcares y Hierro (TSI)
        • Agar LIA
        • Agar Citrato Simmons
        • Medio de SIM
        • Agar Kligler
        • Movilidad, Indol, Ornitina (MIO)
        • Urea de Crhistensen
        • Acetato de Sodio
        • Malonato y Fenilalanina Deshidrogenasa
        • Rojo de Metilo (RM)
        • Vogues Proskauer (VP)
        • Mucato
        • Orto-Nitro para-Fenil Galactosidasa (ONPG)
        • Fermentación de Carbohidratos en Caldo
        • Glucosa OF (Oxidación-Fermentación)
        • Caldo de Nitrato
        • Medio de Arginina
  • Reactivo
    • Agua amortiguada
    • Apv(alcohol polivinílico)
    • Drabkin, para dilución
    • Fenol acuoso al 5%
    • Formaldehído, solución al 10%
    • Formol
    • Giemsa, colorante
    • Giemsa diluido, colorante
    • Leishman, colorante
    • Lugol (solución yodo-yodurada)
    • Mif (merthiolate-iodine-formol)
    • Reactivos tinción gram
    • Reactivos tinción ziehl y neelsen
    • Solución amortiguadora tamponada
    • Solución de citrato trisódico
    • Solución de citrato y formaldehído
    • Solución de cloruro de sodio 0.85%
    • Solución de sulfato de zinc
    • Solución salina al 0.9%
    • Solución salina al 10%
    • Solución salina más antibióticos
    • Solución yodurada de lugol al 1%
    • Wright, colorante
    • Coloración Gram de Hucker
    • Coloración Gram - Modificación de Kopeloff

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Faríngeas

MATERIALES
- Hisopos de algodón estéril en tubos de ensayo, para recolectar las muestras.
- Un baja lengua estéril.
- Una mascarilla protectora.
- Tubo estéril.  
 
MÉTODO DE OBTENCIÓN
1. El paciente debe permanecer sentado en la posición más cómoda y con la mejor iluminación (se puede usar una linterna).
2. Indicar al paciente que abra la boca sin sacar la lengua y que diga "Ahhh...".
3. Mientras el paciente dice "Ahhh...", bajar las 2/3 anteriores de la lengua con el bajalengua, empleando la mano izquierda. 
4. Se deberá observar las amígdalas, el fondo de la faringe limitada por los pilares y úvula.
5. Introducir el hisopo con la mano derecha. Evitar tocar la lengua, que se encuentra cubierta de microorganismos.  
6. Ubicar el lugar inflamado de la garganta (amígdalas o pilares). Estará enrojecida o blanca, según sea el caso.
7. Frotar el hisopo con firmeza en la parte inflamada, haciéndolo girar y si existen membranas, recójalas con el hisopo.
8. Si no se encuentra inflamación pasar el hisopo por las amígdalas, los pilares. Evitar tocar la úvula.
9. Introducir el hisopo con la muestra en el tubo estéril.
 
Fuente: Procedimientos de Laboratorio. Ministerio de Salud. INS. Perú.

secreción, faríngeas, amígdalas

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Ótica

MATERIALES
- Hisopo de algodón no demasiado abultado.
- Tubo estéril.
 
MÉTODO DE OBTENCIÓN
1. Si el pus sale al exterior y llena el pabellón de la oreja, es preferible eliminarlo previamente con algodón estéril.
2. Introducir el hisopo en el conducto auditivo externo siguiendo una  dirección ligeramente oblicua de atrás hacia adelante y de abajo hacia arriba.
3. Introducir el hisopo con la muestra en el tubo estéril.  
 
Fuente: Procedimientos de Laboratorio. Ministerio de Salud. INS. Perú.

secreción, óticas

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Uretral

MATERIALES
- Asa bacteriológica estéril o hisopo estéril de alambre delgado y de algodón no demasiado abultado.
- Guantes quirúrgicos estériles.
- Solución salina estéril.
- Tubo con medio de transporte.
 
MÉTODO DE OBTENCIÓN
1. Tomar la muestra a primera hora de la mañana, antes de que el paciente haya orinado.
2. Limpiar el meato con algodón humedecido con solución salina estéril. 
3. Aplicar al pene una ligera presión (desde atrás), de manera que salga  una gota de secreción (pus) por el meato.
4. Si la gota de pus no aparece introducir el asa o hisopo estéril en el conducto uretral anterior, hasta una profundidad de 2,5 cm aproximadamente para obtener la  muestra.
5. Tomar el pus con el asa o hisopo estéril e introducirlo en el tubo con medio de transporte.
 
Fuente: Procedimientos de Laboratorio. Ministerio de Salud. INS. Perú.

pus, secreción, uretral

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Vaginal

• La muestra debe ser tomada del conducto cervical por un médico o por personal de salud capacitado. 
 
• En los casos de gonorrea crónica se deberá tomar inmediatamente antes o inmediatamente después del  periodo menstrual.
 
MATERIALES
- Hisopo estéril de alambre delgado y de algodón no demasiado abultado.
- Guates quirúrgicos estériles. 
- Espéculo estéril.
- Tubo con medio de transporte.
 
MÉTODO DE OBTENCIÓN
1. Colocar a la paciente en posición ginecológica. 
2. Entreabrir la vulva.
3. Introducir un espéculo humedecido en agua tibia en la vagina. No usar lubricante. Visualizar el cuello uterino.
4. Introducir el hisopo estéril dentro del canal cervical rotándolo suavemente y permitiendo que permanezca allí por 10 - 30 segundos; retirar y colocar en un tubo estéril o en un tubo con medio de transporte. 
     
Atención:
 
En mujeres que no han tenido relaciones sexuales se puede tomar la muestra a través del orificio vaginal con un hisopo estéril.
 
Fuente: Procedimientos de Laboratorio. Ministerio de Salud. INS. Perú.

secreción, vaginal, espéculo

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Preparación Frotis

• El examen microscópico directo de frotis teñidos constituye una manera
eficiente para estudiar la presencia de bacterias en medios biológicos que
normalmente son estériles, como el líquido cefalorraquídeo y el liquido pleural.
• También se aplica a la orina centrifugada, esputo, pus y muestras que provienen del cuello del útero, vagina, bronquios, etc.
 
MATERIALES
ASA DE SIEMBRA
• Es un alambre, con una aleación de níquel y cromo, que por un extremo
se fija a un mango que lo sostiene y por el otro extremo se dobla formando un pequeño círculo de aproximadamente 2mm.
PORTAOBJETOS 
• Se debe limpiar con una mezcla de etanol y éter, mediante una gasa. El
portaobjetos deberá estar rotulado.
MECHERO DE BUNSEN O DE ALCOHOL
 
MÉTODO
1. Flamear el asa de siembra hasta que se ponga al rojo vivo, para lograrlo, colocar el asa por arriba de la porción azul de la llama, en posición vertical.
2. Dejar enfriar el asa, contar hasta 20.
3. Tomar una porción de la muestra que se va a examinar, colocando el asa en posición plana en la superficie del liquido.
4. Colocar el asa sobre el portaobjetos y aplanar ligeramente en el centro de éste.
5. Sosteniendo todavía el asa aplanada sobre el portaobjetos, mover trazando un espiral del centro a la periferia.
6. Dejar cierto espacio entre la muestra y cada uno de los cuatro lados del portaobjetos.
7. Dejar secar la muestra completamente al aire.
8. En caso de frotis para diagnostico citológico (cuello de útero, vagina, etc.), los frotis no se deben dejar secar, pues se alteraría la morfología de las células. En cuanto estén listos mientras están húmedos todavía, se fijan con alcohol absoluto y éter o laca especial en spray.
9. Flamear de nuevo el asa hasta que esté al rojo vivo para destruir las bacterias que se encuentren en ella, una vez usada.
10. Proceder a fijar, pasando el portaobjetos tres veces a través de la llama del mechero de Bunsen, con la muestra hacia arriba. Dejarlo enfriar antes de aplicar la tinción.
11. Hacer la tinción de frotis fijo, se tiene la tinción de Gram, de Ziehl y Neelsen.
12. Es preferible marcar un círculo alrededor del frotis con un lápiz graso, a fin de que se pueda ver más fácilmente.
 
Fuente: Procedimientos de Laboratorio. Ministerio de Salud. INS. Perú.

frotis, microscópico

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